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PCR扩增产物的克隆一TA克隆法
实验方法原理 | TA克隆系统由Invitrogen公司(SanDiego,CA)发展而来的商业性试剂盒,它用于PCR产物的克隆和测序。其原理是利用Taq酶能够在PCR产物的3’末端加上一个非模板依赖的A,而T载体是一种带有3’T突出端的载体,在连接酶作用下,可以快速地、一步到位地把PCR产物直接插入到质粒载体的多克隆位点(MCS)中。 外源DNA与载体分子的连接就是DNA重组,这样重新组合的DNA叫做重组体或重组子。重组的DNA分子是在DNA连接酶的作用下,有Mg2+、ATP存在的连接缓冲系统中,将分别经酶切的载体分子与外源DNA分子进行连接。DNA连接酶有两种:T4噬菌体DNA连接酶和大肠杆菌DNA连接酶。两种DNA连接酶都有将两个带有相同粘性末端的DNA分子连在一起的功能,而且T4噬菌体DNA连接酶还有一种大肠杆菌DNA连接酶没有的特性,即能使两个平末端的双链DNA分子连接起来。但这种连接的效率比粘性末端的连接率低,一般可通过提高T4噬菌体DNA连接酶浓度或增加DNA浓度来提高平末端的连接效率。 T4噬菌体DNA连接酶催化DNA连接反应分为3步:首先,T4DNA连接酶与辅因子ATP形成酶-ATP复合物;然后,酶-ATP复合物再结合到具有5’磷酸基和3’羟基切口的DNA上,使DNA腺苷化;最后产生一个新的磷酸二酯键,把切口封起来。连接反应通常将两个不同大小的片断相连。因为DNA片断有两个端点,所以切割时出现两种可能,一种是单酶切,另一种是双酶切,这两种酶切方法在基因工程操作中都经常用到。对于单酶切来说,载体与供体的末端都相同,连接可以在任何末端之间进行,这样就导致了大量的自连接产物。为了减少自环的高本底,可对载体进行5’除磷酸处理,原理是连接酶只能连接DNA片断的3’OH末端与5’端,所以除磷后载体不会自环。一旦有外源片断插入时,由外源片断提供5’端就能与载体进行连接。通过这种方法可大大减少由载体的自环造成的高本底。对于双酶切来说,无论载体与供体同一片段上都有不同的末端,这样就避免了载体与供体的自环,能使有效连接产物大大增加。双酶切的另一个特点是能将供体分子定向连接到载体上。 连接反应的温度在37℃时有利于连接酶的活性。但是在这个温度下粘末端的氢键结合是不稳定的。因此采取折中的温度,即12-16℃,连接12-16h(过夜),这样既可最大限度地发挥连接酶的活性,又兼顾到短暂配对结构的稳定。TaqDNA酶扩增的PCR产物,其DNA双链前后末端都有一个游离的A碱基,可以与pGEM-TEasyVector末端游离的T碱基互补形成环状重组T质粒。 | ||||||||||
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实验材料 | 外源DNA片断 试剂、试剂盒 | pMD18-TVectorLigationbufferT4ligateaserATP 仪器、耗材 | 超净工作台离心机恒温摇床恒温培养箱培养皿试管离心管电泳仪电泳槽凝胶样品梳移液器
实验步骤 | 一、大肠杆菌感受态细胞的制备 1. 取大肠杆菌JM109保存液50μl,接种于4mlLB(或SOB)液体培养基中,37℃,300rpm振荡培养过夜,第二天取50μl转接到新的4mlLB(或SOB)液体培养基中扩大培养3h至OD600=0.35~0.4,在无菌操作台上取1ml菌液于1.5ml离心管中,冰浴10min。 2. 4℃,5000rpm离心2min,去上清液。 3. 加入750μl预冷的0.1MCaCl2重悬菌体,冰浴30min。 4. 4℃,5000rpm离心2min,弃上清液。 5. 加入100μl冰冷的0.1MCaCl2轻轻重悬菌体,冰浴2h后,4℃保存备用。 二、重组DNA的转化 1. 将含Amp、X-Gal、IPTG的LB平板37℃预热。 2. 于100μl感受态细胞中加入10μl连接产物,冰浴30min。 3. 将离心管转入42℃水浴,热冲击90秒,然后不要摇动离心管,迅速将其放在冰上2min。 4. 在离心管中加入SOC培养基300μl,枪头混匀,37℃、150rpm温和摇振60min。 5. 将200μl转化菌液均匀地涂布于含50mg/mlAmp、20mg/mlX-gal、200mg/mlIPTG的LB平板上,37℃倒置培养过夜,挑选白色菌落进行鉴定。 三、重组质粒的鉴定 方案一:菌落PCR (1)制备PCR混合液。 (2)用经灭菌的10μl枪头(不用牙签)挑去白色菌落,迅速地使挑取物溶在上述混合液中。 (3)盖上离心管得盖子,在沸水上温育10min。 (4)将步骤⑶的样品冷却至室温,离心数秒,然后于管中加入TaKaRarTaq酶0.25ul。 (5)按以下条件进行PCR反应:94℃预变性3min;然后进行30个循环反应,其温度循环条件为:94℃变性1min,57℃退火1min,72℃延伸1min;循环结束后72℃再延伸5min。 (6)取5μlPCR产物在1%琼脂糖凝胶上进行电泳检测。 方案二:质粒PCR 1. 碱裂解法少量制备质粒DNA (1)用离心管收集4ml在LB培养基(含Amp)中培养过夜的菌液,14000rpm离心30秒,弃尽上清。 (2)用250μl已加入RNaseA1的BufferS1充分悬浮细菌沉淀。 (3)加入250μlBufferS2,温和但充分地上下翻转混合4-6次,此步骤不宜超过5min。*BufferS2使用后应立即盖紧瓶盖,以免空气中的CO2中和BufferS2中的NaOH,降低溶菌效率。 (4)加入400μlBufferS3,温和地上下翻转8-10次,室温静置2min,14000rpm离心10min。 *若离心后凝结块未沉淀到离心管底部,应再上下翻转数次,12000g离心3min。 (5)将DNA-prepTube置于2-mlMicrofugeTube中,将步⑷中的混合液移入DNA-prepTube中,5500rpm离心1min。 (6)弃滤液,将DNA-prepTube置回到原2mlMicrofugeTube中,加入500μlBufferW1,5500rpm离心1min。 (7)弃滤液,将DNA-prepTube置回到原2mlMicrofugeTube中,加入700μl已加无水乙醇的BufferW2,5500rpm离心1min,以同样的方法再用700μl已加无水乙醇的BufferW2洗涤一次。 (8)弃滤液,将DNA-prepTube置回到原2mlMicrofugeTube中,14000rpm离心1min。 (9)连滤液一并弃掉收集管,将DNA-prepTube置于一新的1.5ml离心管中,在silica膜中央加入25-30μlEluent或去离子水。 (10)室温静置2min,14000rpm离心1min洗脱DNA。 (11)取5μL样品,1%琼脂糖凝胶电泳初步筛选重组转化子。 2. 抽提纯化质粒DNA酚、氯仿抽提可以去除碱裂解法制备的质粒DNA中残留的蛋白质。 (1)加TE稀释质粒DNA溶液至300μL。 (2)加等体积的酚:氯仿:异戊醇(25:24:1),震荡混匀,静置3min。 (3)14000rpm离心5min,吸上清液,加等体积的酚:氯仿:异戊醇(25:24:1),混匀,静置3min。 (4)14000rpm离心5min,吸上清液,加等体积的氯仿:异戊醇(24:1),混匀,静置3min。 (5)14000rpm离心5min,吸上清液,加2.5倍体积预冷的无水乙醇,混匀后-20℃放置15min,沉淀质粒DNA。 (6)14000rpm离心13min,弃上清液,沉淀加入200μL70%乙醇洗涤一次,室温干燥,用20μL去离子双蒸水溶解质粒DNA沉淀,-20℃保存待用。 (7)取5μl样品,1%琼脂糖凝胶电泳检测纯化结果。 3. 质粒PCR (1)PCR反应体系如下: (2)PCR扩增反应条件:94℃预变性3min;然后进行30个循环反应,其温度循环条件为: 94℃变性1min,57℃退火1min,72℃延伸1min;循环结束后72℃再延伸5min。 (3)取5μlPCR产物于1%琼脂糖凝胶进行电泳检测,方法与试验二相同。 注意事项 | 1. 要获得目的基因的TA克隆,PCR产物的特异性要好。 2. PCR产物在TA克隆前要通过纯化。 3. 在PCR产物回收、纯化过程中防止外来DNA污染。 4. 制备感受态细胞的全部操作均须于冰浴操作,同时注意近火无菌操作,防止感受态细胞受杂菌污染。 5. 42℃热处理时很关键,转移速度要快,且温度要准确。 6. 菌液涂皿操作时,应避免反复来回涂布,因为感受态细菌的细胞壁有了变化,过多的机械挤压涂布会使细胞破裂,影响转化率。 8. LigationSolutionI请于冰中融解。 9. 在进行克隆时,VectorDNA和InsertDNA的摩尔比一般为:1:2~10。在本制品中,pMD18-TVector1ml(50ng)的摩尔数约为0.03pmol,ControlInsertDNA1ml(50ng)的摩尔数约为0.15pmol。 10. 克隆时使用的InsertDNA片段(PCR产物)尽量进行切胶回收纯化,PCR产物中的短片段DNA(甚至是电泳也无法确认的非特异性小片段)、残存引物等杂质都会影响TA克隆的效率。 11. 按照本实验操作进行连接后,直接进行转化时的连接液不要超过20ml。当进行转化的DNA用量较大或准备进行电转化时,需对连接液进行乙醇沉淀,纯化DNA后再进行转化。 12. 连接反应请在16℃下进行,温度升高(>26℃)较难形成环状DNA。 13. 连接效率偏低时,可适当延长连接时间至数小时。 14. 感受态细胞可使用适合于pUC系列载体的感受态细胞,如:JM109,DH5a等。 其他 | 一、常见问题 1. 怎样提高pMD18-TVector的克隆效率? (1)纯化PCR产物,切胶回收的PCR片段最好。 (2)除去残存的引物等杂质。 (3)DNA片段的立体结构、DNA片段的长短都会影响克隆效率。一般情况下,大片段DNA的克隆效率(连接效率与转化效率)小于短片段DNA,在使用大片段DNA的连接液进行转化时,建议采用电转化方法。 2. PCR产物难以插入载体,为什么? (1)确认PCR反应使用的DNA聚合酶在PCR产物的3"端是否附加了"A"。有些DNA聚合酶扩增的PCR产物是平端,如使用本公司的PyrobestDNA聚合酶(TaKaRaCode:DR005)等扩增得到的PCR产物不能直接用于TA克隆;PCR产物保存时间不要过长,长时间保存的PCR产物会脱去末端的"A"碱基。 (2)PCR产物中短片段杂质DNA太多,这时应切胶回收纯化DNA片段,回收时PCR产物不要在紫外线下暴露时间过长。 (3)确认感受态细胞的转化效率,使用的感受态细胞的转化效率最好大于108cfu/mgpUC118DNA。 (4)确认LigationSolutionI的连接效率是否降低,多次反复冻融会降低的LigationSolutionI连接效率。 (5)确认抗生素的浓度是否过大。 (6)最好使用新配制的平板培养基。 3. 转化后的菌落全为蓝色(或淡蓝色),为什么? 插入的PCR片段较短(小于500bp),且插入片段没有影响lacZ基因的读框时,平板培养基上出现的菌落有可能呈现蓝色。 4. 插入的PCR产物进行测序时,可使用何种引物? 本制品的载体来源于pUC18载体。因此,用于pUC18载体测序的引物都可以使用。
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