组织标本

大鼠神经元细胞的分离和培养实验一解离神经元培养物的制备

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实验材料
试剂、试剂盒
仪器、耗材
实验步骤
1.杀死怀孕18天母鼠(常用过量CO2使其窒息),用无菌器械取出胚胎,放在无菌的培养皿中。

2.取下胚胎的头,放在盛有4ml不含Ca2+和Mg2+的平衡盐溶液(BSS)的培养皿中。

3.从头颅骨上取下脑,放在35mm培养皿中的BSS液滴上,培养皿中半装满Paraplast(Sigma)。

4.在显微镜下剥离脑膜,取下海马体,放在装有BSS的35mm培养皿中。

5.海马体在新鲜配制的0.25%胰酶BSS溶液中37℃孵育15分钟。

6.小心吸掉胰酶溶液,加入5mlBSS,层流柜中室温放置5分钟。重复此步两次或更多次,最后加入2mlBSS。

7.首先用普通巴斯德吸管分离细胞,然后换用一支用火烧平尖端、内径缩小一半的吸管。

8.计数细胞,确定细胞密度。

9.所需数目的细胞悬浮于接种培养基中,接种培养皿中poly-L-lysine预处理的盖玻片。如果用于生化实验,细胞直接接种poly-L-lysine处理的培养皿。


10.2~4小时后,盖玻片转移至含有单层神经胶质的培养皿中,培养皿中是维持培养基。

11.每周更换3ml培养液。