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用于表达分析的 mRNA 的制备实验一基本方案 用于表达监测以及与寡核苷酸芯片杂交的 mRNA 扩增
实验方法原理 | 扩增步骤完全决定于干净、完整的起始RNA。对培养的细胞,作者采用胍盐裂解再用树脂纯化(如QiagenRNeasyKit)的方案。扩增mRNA可从Poly(A)+或总RNA开始。尽管poly(A)+灵敏度更高,因为除掉了CDNA反应期间大部分与rRNA的错配,而使用总RNA起始则可以分析那些细胞或组织有限的生物系统。使用总RNA起始一个重要的修正是将cDNA第一链合成的温度从37℃提高到50℃。探针选择严格限制在编码区最后的600个碱基;除非3"非翻译区长度大于800个碱基,此时一些非翻译序列可能也被包括进来了。 | ||||||||||
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实验材料 | 样品RNA:poly(A)+或总RNA 试剂、试剂盒 | SuperScriptcDNAkit(LifeTechologies)DTT缓冲液乙醇 仪器、耗材 | 热循环仪Lyophilizer(冻干机)Rotisserie式摇床50℃加热炉
实验步骤 | 1.实验前准备 1.1材料 样品RNA:poly(A)+或总RNA,有义转录库对照 1.2试剂 SuperScriptcDNAkit(LifeTechologies) T7T24引物 RNA酶抑制剂(LifeTechnologies或Ambion公司) 无RNA酶水(DEPC处理过的水,玻璃蒸馏) 25:24:1(V/V/V)酚:氯仿:异戊醇(分子生物学级) 7.5mol/L乙酸铵无水乙醇 无RNA酶的70%乙醇(预冷至-20℃) 10×转录缓冲液(Ambion) 10×rNTP混合液 100mmol/LDTT 10mmol/LBio-ll-CTP和Bioll-UTP(EnzoDiagnostics) 2500U/ulT7RNA聚合酶(Epicentre) RNeasy小柱带RLT和RPE缓冲液及收集管(Qiagen) 5×片段化缓冲液 20×SSPE(Bio-Wh1ttaker) 0.5%(V/V)TritonX-100(分子生物学级;Sigma)溶于无RNA酶水 10mg/ml鲱精DNA(Promega) 500pmol/LBio948 20×反义转录库对照 6×SSPET:6×SSPE含有0.005%(V/V)TritonX-100 1.3耗材 热循环仪(例如Perkin-Elmer公司9600型PCR仪,带热盖) 0.1~10ul带滤芯枪头(Continental) Lyophilizer(冻干机) 小薄壁PCR管 GeneChip(Affymetrix) 1~200ul带滤芯凝胶上样枪头(Fisher) Rotisserie式摇床(AppropriateTechnicalResources) 50℃加热炉 2.在PCR仪上设定下列程序: 10min70℃ 65min37℃(用总RNA时50℃) 150min15.8℃ 无限4℃(保温) 3.用下列试剂为每个RNA样品配10ul第一链混合液,用带滤芯的枪头: 4ul5×第一链缓冲液 200pmolT7T24引物 1ulRNA酶抑制剂 1ul200U/ulSuperScriptⅡ逆转录酶 加无RNA酶的水至10ul 4.将每个RNA样品与有义转录库对照混合。每1ugpoly(A)+样品加5ul对照或每10~20总RNA加1ml对照。冷冻干燥至每管体积小于10ul,加无RNA酶的水至10ul。同时用手预热第一链混合液。 5.将每份RNA转移到小薄壁PCR管中,放进PCR仪,启动所设程序(第一步)。 6.70℃那步完成后,在温度降到37℃(或50℃)2min的时间里,加入预热(手中)的第一链混合液(每管10ul)。 7.在合适的反应温度继续保温60min。 8.每管配制130ul第二链反应混合液: 91ul无RNA酶的水 30ul5×第二链缓冲液 3ul10mmol/LdNTP 1ul10U/ulE.coli连接酶 1ul2U/ulE.coliRNA酶H 4ul10U/ulE.coliDNA聚合酶 这个混合液可以先配制,在冰上至多放置90min。 9.当PCR仪温度降到15.8℃时,每管加入130ul第二链反应混合液(总共150ul)。用枪头反复吸放混匀,在此温度下保温>2h。 10.加入2ul5U/ul的T4DNA聚合酶继续保温5min。把样品转移到冰上。 11.加入150ul25:24:1的酸:氯仿:异戊醇,涡旋混匀,室温13000g离心5min。 12.小心地将水相转移到一个新的管子,不要吸到中间相。加入70ul7.5mol/L乙酸铵和0.5ml无水乙醇后混匀。室温13000g离心20min。 13.移去上清,沉淀用0.5ml冷(-20℃)70%乙醇洗涤,涡旋混合。 14.室温13000g离心10min。移去上清,沉淀空气晾干几分钟。 15.用25无RNA酶的水溶解cDNA沉淀并定量。 16.每种cDNA样品,按下面组分配制一个反应体系: 100ngcDNA 6ul10×转录缓冲液 6ul10×rNTP混合液 3ul100mmol/LDTT 2.4ul10mmol/LBio-ll-UTP 2.4ul10mmol/LBio-ll-CTP 2ulRNA酶抑制剂 2ul2500U/ulT7RNA聚合酶 无RNA酶的水配平到60ul 冰上可以放至多3h,用前升温到室温。 17.37℃保温8h至过夜。纯化前可以在-80℃放置至多48h。 18.加入无RNA酶水至100ul,加入350ulRLT缓冲液,混匀。加入250ul无水乙醇,混匀。 19.将每个样品上样到一个套进收集管内的RNeasy小柱上。台式离心机室温8000g以上离心15s。 20.将柱子转到新的收集管,加入500RPE缓冲液,台式离心机室温8000g以上离心15s。 21.弃去流出液,将柱子重新放入此收集管。加入500ulRPE缓冲液,台式离心机以最大速度离心2min。 22.把柱子转移到一个新收集管。加入50ul无RNA酶的水,8000g以上离心1min。重复此步骤。合并两次洗脱液。 23.在260nm用分光光度法测RNA的量。 24.取10体外转录的RNA用无RNA酶的水将体积配到24ul。加入6ul5×片段化缓冲液。小心混匀,在PCR仪上95℃温育35min。令其冷却到室温。-80℃可存放一年,用前37℃融化5min。 25.按下列组分为每个反应配170ul杂交反应母液: 51ul20×SSPE 1.7ul0.5%TritonX-100 1.7ul10mg/ml鲱精DNA 20ul500pmol/LBio948 10ul20×反义转录库对照 85.6ul无RNA酶的水 26.每份30ul片段化的转录RNA加入170ul杂交反应母液。在热循环仪上以99℃加热10min,再移到37℃放置5min以上。 27.微量离心机最大转速离心5min。 28.从GeneChip的上层隔膜插入一个带滤芯的枪头形成出气孔。从芯片的下层隔膜用带滤芯的上样枪头加入200ul杂交液。拿掉出气孔,用保鲜膜覆盖上下两层。 29.在rotisserie式旋转仪上以60r/min转速40℃保温过夜(16~18h)。 30.将芯片转入50℃加热炉,继续旋转芯片整整1h。 31.从炉内拿出芯片。从上层隔膜处插入带滤芯的枪头。 32.微量移液器按到底,将200ul上样枪头从下层隔膜间插入。垂直拿起芯片,缓慢抽出所有杂交液并放进微量离心管内保存于-20℃。 33.将芯片内充满6×SSPRET。 34.按厂商的说明书洗涤芯片并用藻红素染色。尽快扫描芯片。 注意事项 | 1.许多缓冲液和酶附带在SuperScriptcDNA试剂盒里。附带的酶量不足的话可以单独从LifeTechnologies公司定购。 2.所有需要控制温度的反应都在适当的热循环仪上进行。 其他 |
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