前言

血小板活化试验，对于血小板功能、心血管疾病的研究，有重要意义。使用流式细胞仪进行多参数分析，可以特异灵敏地检测血小板表面标记，了解血小板的活化状态和反应性，并同时获得更多关于血小板的信息。在疾病监测、抗血小板治疗病人的筛选及治疗监测、预测并发症等方面有良好的应用前景。

使用推荐的三色流式分析方法检测血小板活化的优点是：

• 检测血小板的反应性。
• 了解血小板活化进程。血小板先发生膜糖蛋白变化，然后是胞浆内颗粒释放到血小板外。
• 同时检测多种血小板表面标志。
• 高度灵敏。
• 直接检测血小板的多种标志。
• 使用全血，标本量少。
• 操作简便快捷，将血小板人工激活减至最低。

　　BDIS血小板活化试剂组成为：

• PAC-1FITC：早期血小板活化的标志物，即活化的gpⅡb/Ⅲa复合物，抗体与活化后血小板膜表面的gpⅡb/Ⅲa复合物纤维蛋白原结合位点相结合。BDIS抗体为IgM型，建议使用PAC-1结合阻断剂RGDS做阴性对照。
• CD62PPE：血小板活化后期的标志物，特异地与活化血小板结合。静止血小板胞浆内a颗粒含有CD62P，血小板活化时，颗粒内糖蛋白向膜外释放，血小板表面表达CD62P。
• CD61PerCP：特异的泛血小板表面标记，既与活化血小板结合，也与未活化血小板结合。CD61与CD41联合，即为血小板表面gpⅡb/Ⅲa复合物。在本试验中，用FL3设阈值。

试验用品

• 采血管：枸橼酸钠抗凝的真空采血管。
• 一次性12×75mmFalcon试管。
• 微量加样器和加样头。
• BD抗体：2-8℃保存。

• RGDS(PAC-1阻断剂)：用PBS配制，10mg/ml。
• 血小板激活剂：ADP，浓度2′10-4M，2-8℃保存。也可选用其他激活剂，如PMA、纤维蛋白、TRAP。
• PBS缓冲液：含0.1%NaN3，过滤后2-8℃保存。
• 固定液：含1%多聚甲醛的PBS缓冲液，2-8℃可保存一周。
• 振荡混匀器。
• FACS流式细胞仪：进行数据获取。
• CaliBRITEBeads/FACSComp软件：FACS仪器校正，预设获取条件。
• CellQuest软件：试验数据获取和分析软件。

操作步骤

1.标本采集：(1)采血管顺序编号。(2)抽取静脉血，采血管中注入2ml。(3)于10分钟之内完成血小板激活和染色步骤，操作时应注意减少人工激活。

2.血小板激活：(1)试管内加入50mlADP，450ml全血，轻轻摇匀。(2)室温孵育5分钟。(3)立即染色。

3.荧光抗体染色：(1)Falcon管编号。(2)在对照管中加入PE同型对照、CD61PerCP、PAC-1各20ml，RGDS加10ml。(3)在试验管中加入三种抗体各20ml。(4)在对照管和试验管中各加入未激活或激活的血标本5ml。(5)轻轻混匀，室温暗处孵育15-20分钟。(6)各管中加入1ml冷的固定液(2-8℃)，充分混匀，2-8℃阴暗处放置30分钟。(7)24小时内上机分析。

4.上机获取数据：

(1)开机：

• 检查鞘液筒装满，废液筒倒空。
• 先打开流式细胞仪，再打开计算机。
• 仪器气路加压，排空气泡。
• 做FACSComp。

(2)打开CellQuest，顺序放置对照管和试验管，获取数据：

• 调出获取条件，FSC和SSC选择Log方式。
• 获取条件为CD61PerCP阳性。
• 使用对照管调整FL1和FL2的PMT，使阴性群体位于FL1vsFL2点图左下角。
• 分别使用PAC-1FITC/IgG1PE/CD61PerCP和PAC-1FITC+RGDS/CD62PPE/CD61PerCP调整FL2-FL1和FL1-FL2补偿。
• 获取各管的试验数据。

5.结果分析：

在CD61vsSSC点图中设门找血小板群。CD61vsSSC点图显示有三群，CD61阳性/低SSC一群主要由单个血小板组成，CD61阳性/高SSC一群主要由黏附血小板的血细胞组成，CD61阳性/散射光更低的一群主要由血小板来源的碎片组成。由于在生理和病理情况下，血小板群和红细胞群的大小、颗粒度会有交叉，因此，不建议使用FSC-SSC图设门。

在CD61vsSSC点图中找出CD61PerCP阳性的血小板群(单个血小板和黏附在WBC上的血小板)，设门。门内做PAC-1FITCvsCD62PPE点图的双参数分析，统计结果。

注意事项

1.采血时请用大号针管，抽出的前2ml血应弃去不用。

2.尽量避免标本受到物理振动。

3.取血后10分钟内完成染色操作。

4.在Falcon管中加血标本5ml，管壁上不能有残留血，未染色的部分会影响试验结果。

5.为了检测和控制血小板体外激活，建议使用正常未受激活的血标本平行做质量控制。

附：BDIS血小板活化试剂

BD抗体：

辅助试剂：

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