- [04-20]蛋白透析中的沉淀问题分析和解决
- [02-02]从零开始学PCR技术(二):Taq DNA酶_简说基因
- [01-22]【分享】多糖化学和多糖生物学FTP(密码1月19号更新)
- [08-22]可溶性表达的蛋白如何纯化?纯化后如何除咪唑?作业内容作...
- [11-23]两次氯化铯密度梯度离心纯化重组腺病毒
- [01-22]HisTag蛋白纯化原理、步骤及常见问题
- [04-07]透析相关问答,透析知道,透析疑问,透析解答,透析说明,透析论坛蚂蚁...
- [08-12]中药药物评价对多糖类有效部位新药药学研究的建议
- [09-11]【求助】如何去除小分子蛋白里面含有的色素和糖类_问答详情_透析...
TaqDNA聚合酶表达载体的构建与提取纯化
1.背景
重组TaqDNA聚合酶基因及表达载体插入重组TaqDNA聚合酶基因的pET-28a表达质粒,该质粒是由美国Novagen公司推出的能在大肠杆菌中高效表达的一种质粒载体。该质粒在克隆位点前有1个T7启动子,在T7启动子前有1个6×His-Tagcoding序列,是T7的增强子,多克隆位点上有NcoI—Xhol11个酶切位点,载体上还有1个卡那霉素(Kan)的筛选标记。重组的TaqDNA聚合酶基因通过NdeI和Xhol双酶切克隆在表达质粒pET-28a多克隆位点上。
宿主菌为BL21(DE3)。菌株,即宿主菌BL21经噬菌体DE3溶源化后,DE3的lacUV5强启动子及位于其下游的T7RNA聚合酶基因被整合到宿主菌的基因组DNA中。宿主菌在非代谢性乳糖类似物IPTG的诱导作用下能产生大量的T7RNA聚合酶,而T7RNA聚合酶能特异性地识别Pet-28a表达载体中的T7启动子序列,从而高效地表达目的重组蛋白。由于IPTG不会被宿主菌利用,因此向培养液中加入少量的IPTG就能lacUV5强启动子产生持久的诱导作用。
2.材料与方法
1).TaqDNA聚合酶表达载体构建
Nde1,Sal1双酶切通过pcr引进此双酶切位点taq酶基因,经过T4连接酶连接,将长度为2496bp的taq聚合酶基因,插入同样双酶切的PET28a载体中。
2).工程菌的转化
通过热击转化的方法,将连接产物转化BL21(DE3)表达菌株,通过菌落pcr,提取质粒酶切鉴定确认taq酶基因已经确实插入PET28a载体,送表达菌株测序验证。
3).TaqDNA聚合酶基因的诱导表达
取已鉴定的阳性克隆,转接20ml含卡那霉素的LB液体培养基,37℃培养,活化转化细胞。活化后,再取2mL培养液,转接到200mL含卡那霉素的新鲜LB液体培养基,37℃、150r/mim振荡培养3.5h左右,至OD值=1.0时,加入表达诱导剂(IPTG),至终浓度1.0mmol/L,继续在37℃,150r/min条件下振荡培养,诱导表达,诱导8小时后制备。(转接量、诱导起始时间。诱导用IPTG浓度、诱导时间已经经过系统优化)
4).10000g/4℃/5min收集菌体,用50ml缓冲液A(20mMTris-HCL,0.2MNaCl,PH8.0)洗涤,10000g/4℃/3min,20ml缓冲液A重悬,4mg/ml终浓度溶菌酶室温处理20分钟,加入DTT使终浓度为1mM,加入吐温-20使体积百分比为0.5%,75℃水浴45分钟,15000g/4℃/20分钟,得到的上清即粗蛋白。上清中加入硫酸铵(4M的母液PH8.0)使其终浓度为1.6M,室温磁力搅拌器搅拌30分钟,12000g/室温/20分钟,用缓冲液B(20mMTris-HCL,100mMKCl,0.5mMEDTA,1mMDTT,0.5℅吐温-20,0.5℅NP-40,50℅甘油,PH8.0)重悬,酶液用缓冲液B4℃透析过夜。
5).步骤4所得到的酶液即可用于检测实验,为了得到更纯的酶,粗蛋白经中速滤纸过滤后过QsepharoseFF,收集穿透液,再利用工程菌表达的6His作为纯化标记。上清(补足NaCl至终浓度为0.5M)流过已螯合Ni的Ni-NTA柱,该柱先用10倍床体积结合缓冲液(20mMTris-HCL,0.5MNaCl,PH8.0,5mM咪唑)平衡;再用5倍床体积洗涤缓冲溶液(20mMTris-HCL,0.5MNaCl,PH8.0,15mM/30mM咪唑)依次洗涤;最后用洗脱液(20mMTris-HCL,0.1MNaCl,PH8.0,200mM咪唑)洗脱目的蛋白(SDS-PAGE检测蛋白纯度可达到85%以上)。含目的蛋白的洗脱液用sephadexG25脱盐,脱盐缓冲液即步骤4中的缓冲液B。(也可以将洗脱下来的酶液用2M终浓度硫酸铵沉淀后离心,沉淀用酶保存缓冲液溶解,对检测实验没有影响)
反应缓冲液中的镁离子浓度可以根据具体实验需要进行调整
3.检测
纯化后的酶十倍稀释,荧光定量PCR检测活性
SDS-PAGE检测纯度。
4.总结与心得
1).实验前的准备工作是实验成功的基石,广义的讲:这包括实验大方向的确定、原始文献阅读、基因序列的查找比对、基础工作的准备、每一步实验的分析总结。做好每一步实验的科学分析可以避免后续实验的失败还可以给自己每一小步都成功的感觉,做研发,需要给自己信心。
2).做好预实验,也就是在实验中做好阳性对照和阴性对照,这有助于我们实验结果的分析。举个例子:做转化时,我们加上质粒转化验证感受态没有问题,加上感受态细胞转化抗生素平板验证感受态没有被污染,这样,无论是什么样的转化结果(包括平板筛选结果)都可以得到很好的分析。
3).用实验结果证明实验方法的成功与否,在蛋白纯化过程中,特别是在过阴离子柱或者阳离子柱时,凭空想象的离子浓度和PH值是不可取的,只有通过线性的离子浓度和PH值摸索纯化条件、数次重复对比实验,用真实的实验结果来确定所使用的实验条件。
4).认真原始阅读文献,尽量用最符合生物科学的方法来解决问题,在实验过程中可以参照文献的实验方法,但一切用实验结果说话。
相关回复
-
已帮助 0人
-
已帮助 0人
-
已帮助 0人
-
已帮助 0人
-
已帮助 0人
-
已帮助 0人
-
回复:时间:2008-02-11
你好,我是做蛋白纯化这方面的,主要是Taq酶的表达诱导和纯化方面。在纯化taq酶时采用的是硫酸铵分级沉淀,目前遇到的问题是在第一次加入硫酸铵时,离心后,得不到完全澄清的溶液,有悬浮物,还有像油状的漂浮物在液面上,这一步很不好得到上清液,很消耗时间,而且多次离心和加大离心力都没得明显的效果的希望你能帮我解决下这方面的问题谢谢!
-
已帮助 0人
-
回复:时间:2008-02-11
展开引用何军-hejun你好,我是做蛋白纯化这方面的,主要是Taq酶的表达诱导和纯化方面。在纯化taq酶时采用的是硫酸铵分级沉淀,目前遇到的问题是在第一次加入硫酸铵时,离心后,得不到完全澄清的溶液,有悬浮物,还有像油状的漂浮物在液面上,这一步很不好得到上清液,很消耗时间,而且多次离心和加大离心力都没得明显的效果的希望你能帮我解决下这方面的问题谢谢!......我以前纯化Taq酶的时候,也有这种情况,是正常的,我是采用缩小离心量,以及离心后用移液枪吸取的办法。这步应该是要回收沉淀的啊,你怎么是要得到上清呢?
-
已帮助 0人
-
回复:时间:2008-02-03
嗯,你好,谢谢老师的帮助我们采用的是硫酸铵2步沉淀法,第一次加入硫酸铵是沉淀杂蛋白,离心得到上清液,然后加大硫酸铵的量,这一步的作用是沉淀目标蛋白。我们是一次纯化量是8L的菌液量,最后得到的菌体用bufferA重悬差不多就是800ml的溶液,如果采用缩小离心量是很麻烦的。我们也用枪头吸取溶液上漂浮的油状物,但是有些是吸不干净的。
- 1492656180蛋白透析中的沉淀问题分析和解决
- 1201943460从零开始学PCR技术(二):Taq DNA酶_简说基因
- 1516590009【分享】多糖化学和多糖生物学FTP(密码1月19号更新)
- 1503369960可溶性表达的蛋白如何纯化?纯化后如何除咪唑?作业内容作...
- 1164259560两次氯化铯密度梯度离心纯化重组腺病毒
- 1137863700HisTag蛋白纯化原理、步骤及常见问题
- 1175921400透析相关问答,透析知道,透析疑问,透析解答,透析说明,透析论坛蚂蚁...
- 1123837920中药药物评价对多糖类有效部位新药药学研究的建议
- 1189443240【求助】如何去除小分子蛋白里面含有的色素和糖类_问答详情_透析...
- 1432487340【求助】蛋白过柱后不挂柱,请指教 经验共享 分...
- 1516608057多克隆抗体制备
- 1483610640去垢剂在膜蛋白研究中的应用