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凝胶层析
凝胶层析
凝胶层析又称为分子筛层析或凝胶过滤。具有分子筛作用的物质很多,如浮石、琼脂、琼脂糖、聚乙烯醇、聚丙烯酰胺、葡聚糖凝胶等。以葡聚糖凝胶应用最广,商品名是sephadex型号很多,从G10到G200,它的主要应用范围是:①分级分离各种抗原与抗体;②去掉复合物中的小分子物质。如除盐、荧光素和游离的放射性同位素以及水解的蛋白质碎片;③分析血清中的免疫复合物;④分子量的测定。
(一)原理
凝胶是一种多孔性的不带表面电荷的物质,当带有多种成分的样品溶液在凝胶内运动时,由于它们的分子量不同而表现出速度的快慢,在缓冲液洗脱时,分子量大的物质不能进入凝胶孔内,而在凝胶间几乎是垂直的向下运动,而分子量小的物质则进入凝胶孔内进行“绕道”运行,这样就可以按分子量的大小,先后流出凝胶柱,达到分离的目的。
(二)葡聚糖凝胶的种类与性能
葡聚糖又名右旋糖酐,在它们的长链间以三氯环氧丙烷交联剂交联而成。葡聚糖凝胶具有很强的吸水性,交联度大,吸水性小,相反交联度小,吸水性大。商品名以SephadexG表示,G值越小,交联度越大,吸水性越小,G值越大,交联度越小,吸水性就越大,二者呈反比关系,G值大约为吸水量的10倍。由此可以根据床体积而估算出葡聚糖凝胶干粉的用量。
表1-8Sephadex1的种类与特性
型号 | 分离范围 (分子量) | 吸水量 (ml/g) | 最小溶胀时(h) | 床体积(ml)/干凝胶(mg) |
G10 | <700 | 1.0±0.1 | 31 | 2~3 |
G15 | <1500 | 1.5±0.2 | 31 | 2.5~3.5 |
G25 | <5000 | 2.5±0.2 | 31 | 4~6 |
G50 | 1500~20000 | 8.0±0.3 | 31 | 9~11 |
G75 | 3000~70000 | 7.5±0.5 | 241 | 12~15 |
G100 | 4000~15000 | 10.0±1.0 | 721 | 15~20 |
G150 | 5000~800000 | 15.0±1.5 | 721 | 20~30 |
G200 | 5000~300000 | 20.0±2.0 | 721 | 30~40 |
G25、G50有四种颗粒型号:粗(100µ~300µ)、中(50µ~150µ)、细(20µ~80µ)和超细(10µ~40µ)。G75~G200又有两种颗粒型号:中(40µ~120µ),超细(10µ~40µ)。颗粒越细,流速越慢,分离效果越好。
表1-9DEAE-纤维素与Sephadex1比较
项目 | DEAE纤维素 | Sephadex |
交换量 | 小 | 较大 |
非特异性吸附 | 较大 | 小 |
分离纯度 | 较好 | 好 |
分离时间 | 较粗 | 较长 |
应用范围 | 较窄 | 较宽 |
预处理 | 繁琐 | 方便 |
(三)试验方法
1.凝胶的选择根据层析物质分子量的大小选择不同型号的凝胶,如除盐和除游离的荧光素,则可选用粗、中粒度的G28或G500,G250多用于分离蛋白质单体,G200多用于分离蛋白质凝胶聚合体等。
2.凝胶的预处理称取适量的凝胶加入过量的缓冲液在冰箱(或室温)中充分膨胀,或在沸水中煮,膨胀时间应根据不同型号的凝胶而定(见表1-10)。
表1-10凝胶量与型号和层析柱大小与规格及凝胶用量
层析柱规格 | 凝胶的规格和用量(g) | |||||
直径(cm) | 高(cm) | 容量(ml) | G25 | G50 | G100 | G200 |
0.9 | 15 | 9.5 | 2.5 | 1 | 0.6 | 0.3 |
0.9 | 30 | 19 | 5 | 2 | 1.2 | 0.6 |
0.9 | 60 | 38 | 10 | 4 | 2.5 | 1.2 |
1.6 | 20 | 40 | 10 | 4 | 2.5 | 1.2 |
1.6 | 40 | 80 | 20 | 8 | 5.0 | 2.4 |
1.6 | 70 | 140 | 35 | 14 | 9.0 | 4.4 |
1.6 | 100 | 200 | 50 | 20 | 12.5 | 6 |
2.6 | 40 | 210 | 50 | 20 | 12 | 7 |
2.6 | 70 | 370 | 90 | 35 | 20 | 12 |
2.6 2.6 | 100 60 | 530 1000 | 130 250 | 50 110 | 30 70 | 17 35 |
为使粒子均匀一致需进行浮选,即加入凝胶粒子后,轻轻搅拌,静置20min,倾去沉淀的粒子,如此反复数次即可。
3.装柱层析柱的选择一般根据分离样品的种类和样品的数量而定。纯化蛋白质时,柱床体积应为样品体积的25~100倍。去盐、游离荧光素约为样品体积的4~10倍。柱太短,影响分离效果。柱长一些,分离效果好,但柱太长,则延长分离时间,样品也稀释过度。层析柱的内径也要选择适当。内径过细,会发生“器壁效应”,即靠近管壁的流速要大于中心的流速影响分离效果。所以层析柱的内径和高度应有一定的比例。对于除盐来说应为1︰5~1︰25;对于纯化蛋白质来说应为1︰20~1︰100。
装柱过程基本同离子交换层析柱。
4.加样与洗脱样品体积不宜过多,最好为床体积的1%~5%,最多不要超过10%。样品浓度也不宜过大,浓度过大粘度大,分离效果差,一般不超过4%。
洗脱液应与膨胀一致,否则更换溶剂,凝胶体积会发生变化,影响分离效果。洗脱液要有一定的离子强度和pH值。分离血清蛋白常用0.02~0.1Mol/LpH6.9~8.0的PBS液(0.14Mol/LNaCl)和0.1Mol/LpH8.0Tris-HCl缓冲盐溶液(0.14Mol/LNaCl)。
5.洗脱液收集同离子交换层析。
6.凝胶柱的重复使用与保存当样品的各组分全部洗脱下来之后,即可加入新的样品,继续使用。保存方法有三种:
⑴在液相中保存最方便,即于凝胶悬液中加入防腐剂(一般为0.02%N2N3或0.002%洗必泰)或高压灭菌后
⑵用完后,以水冲洗,然后用60%~70%酒精液冲洗,凝胶体积缩小,即在半收缩状态下保存。
⑶长期不用者,最好以干燥状态保存,即水洗净后,用含乙醇的水洗,逐渐加大乙醇用量,最后用95%的乙醇洗,可全部去水,再用乙烯去除乙醇,抽滤干,于
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