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5.5 RNA SI 核酸酶作图一RNA SI 核酸酶作图

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实验材料
试剂、试剂盒
仪器、耗材
实验步骤
一、材料与设备

1)垂直电泳装置

2)水浴

3)杂交管

4)杂交炉

5)用于从单链DNA模板制备单链DNA探针的试剂。①10X激酶缓冲液:400mmol/LTris-HCl(pH7.8),100mmol/LMgCL2,1OOmmol/L疏基乙醇,250ug/ml牛血淸白蛋白储存于-20℃②[γ-32P」ATP(比活度3000Ci/mmol)③合适的寡核苷酸:溶于蒸馏水,浓度为l0pmol/L,存于—20℃④PNK(polynuclemidekinase):多核甘酸激梅,浓度为10U/ul,存于20°C.⑤10X复性缓冲液:100mmol/LTris-HCl(ph7.5).,l00mmol/LMgCl2,500mnnol/LNaCl,10Ommol/LDTT⑥DNA模板:lmg/ml ⑦10XdNTP混合物:5mmol/LdATP、dCTP、dGTP、dTTP,.⑧KLenow片段:大肠杆菌DNA聚合酶I的大片段,浓度为lOU/ul存于-20℃,⑨合适的限制性内切核酸酶。⑩6%聚丙烯酰胺/8mol/L尿素溶液(溶于0.5XTBE)及甲酰胺染料。⑪X射线胶片:需具有合适的灵敏度.⑫洗脱缓冲液:50mmol/LTrisHCl(PH7.5),0.5mmol/LEDTA。⑬3mol/L乙酸钠(pH7.4)⑭tRNA:10mg/ml储存液,储存于-20°C

6)杂交和S1分析。①4X杂交缓冲液:1.6mmol/LNaCl,40mmol/LPIPES(pH6.4)。②去离子甲酰胺。③石蜡油。④S1缓冲液:300mmol/LNaCl30mmol/L乙酸钠(pH4.5);4.5mmol/L乙酸锌,⑤S1核酸酶:浓度为10U/ul,储存于-20℃。⑥S1终止缓冲液:2.5mol/L乙酸铵,50mmol/LEDTA⑦异丙醇


二、操作方法

(一)单链DNA探针的制备

1.由单链DNA模板制备单链DNA探针

1)寡核苷酸探针的标记:在0.5ml离心管屮加入下列组分:

寡桉苷酸                                          1ul

-32P]ATP                                     10ul

l0x激酶缓冲液                 2ul

dH2O                                               6ul

多核苷酸激酶1ul

将上述组分混合,于37℃保温45min以标记寡核苷酸探针,最后于95℃保温2min以灭活多核苷酸激酶。

2)加入2ul笋链DNA模板,4ul10X复性缓冲液,14ulH2O,依次在65℃10min,55℃lOmin,37℃lOmin保温

3)加入4ulNTP混合物,lulKlenow片段,室温作用10min后于65℃15min,灭活Klenow片段

4)加入适量的NaCl或通过稀释校正混合物的浓度,加人20U限制性内切核酸酶,37℃保温60min

5)加入2ultRNA储存液A1倍体积的3mol/L乙酸钠,3倍体积的乙醇5置于干冰中10min,12000g离心15min以沉淀样品

6)加入20ul甲酰胺染料重悬沉淀,于95℃加热上取样于6%聚丙烯酰胺/尿素凝胶h,至溴酚蓝达到凝胶底端时结束电泳。

7)凝胶用X射线感光片曝光5min,确定单链DNA片段的位置。切下相应的条带,置于500ul洗脱缓冲液中过夜。

8)加入50ul乙酸钠T20ugtRNA,lml乙醇。置于一20℃中2h,12000g离心20min

9)将沉淀作放射活性计数后重悬干甲酰胺中按lO5cmp/ul),储茌于一20°C。此探针剂吋用于杂交和S1分析

2.从双链DNA模板制备单链DNA探针

除下列步骤外,其余步骤均1「由单链DNA模板制备单链DNA探针"

1)先用所选的限制性内切核酸酶切割双链质粒(20ug),沉淀重悬于水中,浓度为lmg/ml

2)复性步骤1「由单链DNA模板制备笮链DNA探针」屮第2)步需快速进行。加热灭活多核苷酸激酶后加入2〜5ug酶切质粒、、4ul10X复性缓冲液、14ul水。95°C保温5min,立即置于冰水屮,然后按步骤由单链DNA模板制备单链DNA探针」中第3)步进行。

3)省去限制性酶切,即1「由单链DNA模板制备单链DNA探针」中第4)步。

(二)杂交和S1核酸酶分析

1)于0.5mlEppendorf管中加入下列组分:

探针(共10000cpm)                                10ul

4X杂交缓冲液                     5ul

RNA(总poly(A)+RNA或离体合成的)     5ul

石蜡油(以防止蒸发)                            20ul

混勻于37℃保温4〜16h。

2)加200ulS1缓冲液(含S1核酸酶100U),充分混匀,置于37°C中5〜30min。加入50ulS1终止缓冲液终止反应,并加入40ugtRNA,300ul异丙醇.置于干冰屮15min,12000g离心15min

3)用80%乙醇洗沉淀物,晾干后重悬于3ul甲酰胺染料中,95℃加热5min,上样于6%聚丙烯酰胺/尿素凝胶,电泳至溴酚蓝到达凝胶底端,将凝胶曝光8〜48h
注意事项
1)寡核苷酸长度为20〜25个核甘酸,并与所分析的DNA互补。

2)单链或双链DNA模板均按标准方法制备,与双链DNA模板制备探针相比,用单链DNA模板制备探针的优点主要是探针的得率更高,用单链模板制备时比活可达1X106-1.5×106cpm

3)为提高片段的冋收率,限制性内切核酸酶应于寡核苷酸杂交处3'端200〜600个核酸的位置上进行酶切,更长的片段就难于从丙烯酰胺胶中回收。如果所用的限制性内切核酸酶切割DNA模板上的不止一个位点,只要它们位于探针序列以外,就不会有妨碍。

4)所分析的RMA种类不同,杂交时间亦不同.若用细胞质总RNA或poly(A)+RNA样品,成于37°C至少杂交12h;而用体外转录的RNA则杂交2〜4h.

5)分析离体转录的RNA时,S1核酸酶作用时间町先选择15min、30min、60min三种,这样可以确定将所有的单链核酸,包栝游离的探针,均被完全消化所需的条件,分析细胞质总RNA或Poly(AVRNA时,S1核酸酶的最佳消化时间为30min,往往比消化离体转录的RNA所需的时间(15min)要长一些。