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用大肠杆菌 DNA 聚合酶 I Klenow 片段及单链 DNA 模板进行双脱氧测序实验
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试剂、试剂盒 | |
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仪器、耗材 | 离心机和转头微量离心管或微量滴定板 |
实验步骤 | 材料 缓冲液和溶液 试剂、缓冲液,储液的组成参见附录1,储液使用前稀释到适当浓度。 dATP(0.1mmol/L) 可选,参见步骤4。 去离子蒸馏水 EDTA(10mmol/L,pH8.0) 延伸/终止混合液和示踪混合液 这些反应混合液可通过混合dNTP和ddNTP储液制备,参见表12-7。 甲酰胺上样缓冲液 TM缓冲液 100mmol/LTris-Cl(pH8.5) 50mmol/LMgCl2 Tris-Cl(1mol/L,pH8.0) 酶和缓冲液 大肠杆菌DNA聚合酶ⅠKienow片段(5u/ul) 每一套四种双脱氧测序反应大约需2.5单位酶。Klenow片段通常保存在含50%甘油的缓冲液中。测序反应中过量使用酶会导致测序凝胶畸变,因为甘油与制备凝胶和凝胶电泳的标准缓冲液TBE中的硼酸盐离子相互作用(请参见本方案末尾疑难解答)。 核酸和寡聚核苷酸 dNTP、ddNTP、dNTP(1mmol/L)和ddNTP(5mmol/L)储液 寡核苷酸引物 浓度约为0.5pmol/ul(约3.3ng/ul),溶于水中。 对于一些结合于靶区域上游载体序列的通用引物,可参见第8章信息栏“通用引物”及本章末信息栏“DNA测序寡核苷酸引物储液制备"。 单链DNA模板 浓度约0.05pmol/ul,相当于约0.15ug/ul的M13噬菌体单链DNA。 小规模制备M13噬菌体重组子单链DNA的浓度一般在0.05到0.5ug/ml范围内。这取决于特定噬菌体的生校速度。在正常的测序反应条件下,模板DNA是过量的。因而每次测序反应中模板量上的微小变化并不影响测序结果的质量。可参见本方案末疑难答。 放射性化合物 [a-32P]dATP(3000Ci/mmol,10mCi/ml)或 [a-33P]dATP(3000Ci/mmol,10mCi/ml)或 [a-35S]dATF(1000Ci/mmol,10mCi/ml)或 5"32P标记的寒核苷酸引物 若不用放射性标记dATf作为内标记,也可以用5’端以32P标记的寡核苷酸引物进行测序反应。此时,可用2ul(约5x105cpm约0.5ng)放射性标记引物和2ul水代替反应中的未标记引物和[32P]dATP(步骤4),其他的步骤相同。一般用多核苷酸激酶催化ATP的[γ-32P]转移至寡核苷酸5"端。详细情況见第10章的方案2。 离心机和转头 离心转头或用于0.5ml微量离心管的衔接头,以及甩平式转头和微量滴定板架(如Sorvall公司产品),聚苯乙烯泡沫或橡胶衬垫。 专用设备 微量离心管(0.5ml)或微量滴定板(柔韧,耐热,每孔容量为300ul的U型底96孔扳)。 参见信息栏"微量滴定板" 方法 1.在0.5ml微量离心管或微量滴定板孔中加入: 单链模板DNA(0.1ug/ul) 5ul 寡核苷酸引物(1ug/ml,约160pmol/m]) 4ul TM缓冲液 1ul 2.封闭试管的顶端或密封微量滴定板,在55°C温育反应混合液5~10min,使寡聚核苷酸引物与DNA模板退火。若有必要,退火的模板和引物可在-20°C下保藏几个月。 3.用字母C、T、A、G标记四个微量心管或96孔U型微量滴定板上四个毗连的小孔;然后在每个小管中加入4ul相应的ddNTP延伸/终止混合液(例如在标记C的微量离心管或微量滴定板孔中加入4ulddCTP混合液,在标记T的微量离心管或微量滴定板孔中加入4ulddTTP混合液等)。 4.把退火后的引物模板溶液放在冰上并加入: [α-32P]dATP或[α-33P]dATP或[α-35S]dATP 1ul Klenow酶(约2.5单位) 1ul 0~1mmol/LdATP(如使用[α-32P]或[α-33P]) 1ul 或 水(如使用[α-35S]dATP) 1ul Klenow酶应储存在不要使其升到室温。酶在冰桶中几小时会丧失活性。 5.取步骤4的混合液3ul加到每一个C、T、A、G管的管壁上或微量滴定板孔的边上。不要让放射性标记混合液与ddNTP延伸/终止混合液接触。加入的液体应挂在管或孔靠近边缘的壁上。 6.把小离心管放入微量离心机内(用合适的转头或适合0.5ml离心管的衔接头,或把它们放入去盖的1.5ml离心管中),或者把微量滴定板放入配有合适衔接头的离心机中,以2000r/min转速离心C、T、A和G各管或滴定板几秒钟,混合反应物。开始延伸/终止反应。37°C温育10~12min。 在室温至37°C温度范围内.Klenow酶都能很好地催化延伸/终止反应和示踪反应。 7.溫育后,沿每一个C、T、A、G管或孔壁加入1ul的示踪液。总共温育10~12min后,离心2s,使示踪液混入到延伸/终止反应液中。再在室温下温育10~12min。 8.第二次温育9~11min后,沿每一个C、T、A、G管或孔壁加入6ul甲酰胺上样缓冲液。不要让溶液滑入聚合反应液中。温育结束,离心微量离心管或微量滴定板终止测序反应。 9.反应物在-20°C时可最多保存5天,也可以用变凝胶电泳直接分析见方案8、9或10、11和12)。热变性后(100°C,2min),在冰上快速冷却。取C、T、A和G反应物各3ul加入测序凝胶各孔中。 |
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