激酶

凝胶中激酶直接分析实验一基本方案 直接分析

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实验方法原理盐酸胍或脲都能使蛋白质变性,选用哪一种取决于不同的激酶,但一般首选盐酸胍,因为对大多数激酶而言它的变性效果更好。
实验材料
试剂、试剂盒
仪器、耗材
实验步骤

1.按适当百分比浓度制备聚丙烯酰胺分离胶,加入10mg/ml激酶底物,使其在分离胶混合液中的终浓度达到1mg/ml。均匀混合后浇入制胶装置使其聚合。


2.按通常的方法制备有激酶活性样品的SDS-PAGE电泳样品,电泳。


3.电泳完毕后将胶放入200ml20%(V/V)2-丙醇/50mmol/LTris•Cl,pH8.0的洗液中,漂洗20min,换入新的缓冲液,再重复2次。


4.用200ml的1mmol/LDTT/50mmol/LTris•ClpH8.0洗3次,每次20min。


5.用250ml的6mol/L盐酸胍/1mmol/LDTT/50mmol/LTris•ClpH8.0或8mol/L脲/1mmol/LDTT/50mmol/LTris•ClpH8.0洗2次,每次30min。


6.在18h以上的周期内用250ml的1mmol/LDTT/0.05%(V/V)Tween20/50mmol/LTris•Cl(pH8.0)的溶液,4℃,洗8~10次,使蛋白质充分复性。


7.将胶放入250ml与激酶匹配的反应缓冲液中(含10mmol/LMgCl2),30℃,温浴20min。


8.移走所有残存缓冲液,将胶放入带有密封盖的容器或可热密封的聚乙烯袋(容器应为放射性物质专用)。加入尽量少的激酶反应缓冲液,以正好覆盖胶面为准。加1/4反应缓冲液容积的10mmol/LMg/ATP溶液(终浓度50μmol/LATP),最后加入20μCi/ml[γ-32P]ATP。


9.30℃,温浴1h。


10.在250ml的5%TCA中将胶浸泡15min,重复一次。在500ml1%焦磷酸钠/5%TCA中洗胶,重复洗涤,直至洗液几乎不含放射性物质。


11.在滤纸上使胶干燥,放射自显影。

注意事项
因为样品具有放射性,在样品制备和转移过程中应多加小心。相关的反应和操作应在带有螺旋盖的微量离心管中进行,以减少32P的放射性污染危害。在电泳时,必须待染料转移出胶后方可进行下一步操作,因为这样可使残留的[γ-32P]ATP伴随染料从胶中转移出去,这也意味着在电泳缓冲液中含有32P,因此应将其按放射性废液的安全处理原则妥善处理。
其他

材料:

10mmol/L激酶底物,如髓鞘碱性蛋白

有激酶活性的酶样品(见用于激酶分析的细胞裂解实验),保持冰浴


试剂:

20%(V/V)2-丙醇/50mmol/LTris•Cl(室温下pH8.0)

1mmol/LDTT/50mmol/LTris•Cl(室温下pH8.0)

6mol/L盐酸胍/1mmol/LDTT/50mmol/LTris•Cl(室温下pH8.0)或8mol/L脲/1mmol/LDTT/50mmol/LTris•Cl(室温下pH8.0)

1mmol/LDTT/0.05%(V/V)Tween20/50mmol/LTris•Cl(4℃,pH8.0)

匹配的激酶反应缓冲液

10mmol/LMg/ATP溶液

10mCi/ml[γ-32P]ATP(3000Ci/mmol;Amersham,DuPontNEN或ICNBiomedicals)

5%(m/V)三氯乙酸(TCA)

1%(m/V)焦磷酸钠/5%(m/V)TCA