1.检测所用细胞数量。

2.收获细胞前在冷环境中强力搅拌时，在所有溶液中加入蛋白酶抑制剂。

3.在培养基A中加入辛醇，混合均匀。

在培养基A中加入辛醇和PMSF，即为培养基B。

4.用吊桶式转头在250ml的圆锥离心瓶中于2℃，1500~2000g离心5分钟收获细胞。

5.快速倒出上清，搅拌松动沉淀。

6.直接在培养基B中重悬沉淀细胞。

细胞破碎

7.在冷的搅拌机中高速搅切30~60秒破碎细胞。

8.用光学显微镜检查匀浆物，载玻片上放少量匀浆物，加上甲基绿。保证小核已从其临近大核的“杯状”处被移去。

差异核片状沉淀

9.将搅拌过的细胞倒入圆锥形离心瓶中，用吊桶式转头在0~4℃于1500~2000g离心5分钟。可用50~250ml的离心瓶。

10.轻微摇动瓶，使上清表面形成的表层松动，将上清和表层倒入冷的搅切机中。

11.用少量细胞核洗涤缓冲液重悬片状沉淀，用甲基绿染色后在光学显微镜下仔细观察小量、检测大核和小核的数量。

12.将片状沉淀收集到试管中，标记为Pn。

13.高速搅切上清20秒，用较高速度离心5分钟。

14.收集上清，在细胞核洗涤缓冲液中重悬片状沉淀，按照步骤11检测细胞核。

15.重复搅切和离心，提高离心速度，分析每次的片状沉淀，直到沉淀中几乎没有大核为止。

16.当最后观察的片状沉淀中小核为大多数时，高速搅切上清20秒，用吊桶式转头在0~4℃于5000g离心5分钟。

17.收集上清，将片状沉淀悬于细胞核洗涤缓冲液中，按照步骤11检测片状沉淀。

计数分离的细胞核总数

18.集中适当的含有大核的片状沉淀；小核也同样。用细胞核洗涤缓冲液重悬核于适当的体积内。

19.用甲基绿稀释少量的大核或小核。用分光光度计计数细胞核数量，计算基于起始细胞的数目。假定生长或饥饿过程中每个细胞有一个大核和一个小核；接合过程中每个细胞的细胞核数量依赖于所处阶段有很大变化。

20.当大核和/或小核收量合适，可在0~4℃于2000g离心5分钟收获细胞核。

21.在少量细胞核洗涤缓冲液中重悬细胞核，用小离心管离心5分钟洗涤细胞核。