流式细胞术工作原理是在细胞分子水平上通过单克隆抗体对单个细胞或其他生物粒子进行多参数、快速的定量分析。它可以高速分析上万个细胞，并能同时从一个细胞中测得多个参数，具有速度快、精度高、准确性好的优点，是当代最先进的细胞定量分析技术之一。

光源、液流通路、信号检测传输和数据的分析系统是流式细胞仪的主要组成。目前临床中运用流式细胞仪进行外周血白细胞、骨髓细胞以及肿瘤细胞等的检测是临床检测的重要组成部分。

• 中文名

• 流式细胞技术

• 外文名

• flowcytometry,FCM

• 工作原理

• 细胞分子水平上通过单克隆抗体

• 组成

• 光源、液流通路、信号检测传输

1. 1基本概念

2. ▪基本结构

3. ▪基本原则

4. 2用于临床

5. 3发展趋势

流式细胞技术（flowcytometry,FCM）是利用流式细胞仪进行的一种单细胞定量分析和分选技术。流式细胞术是单克隆抗体及免疫细胞化学技术、激光和电子计算机科学等高度发展及综合利用的高技术产物。

流式细胞仪由三部分构成

1.液流系统，包括流动室和液流驱动系统；

2.光学系统，包括激发光源和光束收集系统；

3.电子系统，包括光电转换器和数据处理系统。流式细胞仪的工作原理是使悬浮在液体中分散的经荧光标记的细胞或微粒逐个通过样品池，同时由荧光探测器捕获荧光信号并转换成分别代表前向散射角、侧向散射角和不同荧光强度的电脉冲信号，经计算机处理形成相应的点图，直方图和加三维结构图像进行分析。

用于FCM的样本是单细胞悬液，可以是血液、悬浮细胞培养液、各种体液、新鲜实体瘤的单细胞悬液以及石蜡包埋组织的单细胞悬液等。

1.使各种液体和悬浮细胞样本新鲜，尽快完成样本制备和检测；2.针对不同的细胞样本进行适当洗涤、酶消化或EDTA处理，以清除杂质，使粘附的细胞彼此分离而形成单细胞状态；3.对新鲜实体瘤组织可选用或联用酶消化法，机械打散法和化学分散法来获得足够数量的单细胞悬液；4.对石蜡包埋组织应先切成若干40-50um厚的蜡片，经二甲苯脱蜡到水后，再用前述方法制备单细胞悬液；5.单细胞悬液的细胞数不应少于10000个。

流式细胞技术的应用：

1.其测定细胞内DNA的变异系数最小，一般在2%以下；

2.能准确地进行DNA倍体分析；

3.借助于荧光染料进行细胞内蛋白质和核酸的定量研究；

4.快速进行细胞分选和细胞收集；

5.医学应用：免疫功能研究各种干细胞的检测，癌症病人的多药耐药性，细胞功能及代谢动力学研究，血小板分析（心血管疾病），流式细胞术与分子生物学研究；

6应用于外周血内皮细胞测定、调节性T细胞等尖端领域。

流式细胞分析仪临床用于细胞治疗中心在FACSVantage革命化的细胞分选功能基础上推出的分选增强(SortEnhancededition,SE),BDFACSVantageSE,其新功能和新配置通过与标准多激光多荧光系统以及数据处理系统的完美整合，速度更快，功能更强，是当今流式技术的最卓越体现。

当前，临床流式细胞分析已成为检验医学发展的一个热点，其发展趋势主要体现在以下几个方面。

一．从相对细胞计数到绝对细胞计数

流式细胞分析最大的优点是对混合细胞群体中亚群细胞的计数，如淋巴细胞可依其表面标志的不同分为T淋巴细胞（CD3）、B淋巴细胞（CD19）、NK细胞（CD1656/CD3-），T淋巴细胞又可进一步分为辅助/诱导T淋巴细胞（CD3CD4CD8-）和抑制/细胞毒T淋巴细胞（CD3CD4-CD8）等。这些亚群细胞计数过去多以相对百分比表达结果，由于百分比只能代表每种细胞在混合细胞群体中所占的比例，并不能体现其在单位体积血液中的绝对数量，而对艾滋病等一些疾病的临床诊断，有时需要考虑细胞的绝对数量，如患者血液中T辅助/诱导细胞（CD3CD4CD8-）的数量