功能性抗体

人毛细血管内皮细胞的分离一偶联抗PECAM抗体的磁珠的制备

1. 准备下列器械并消毒(高压灭菌,或者可能的话一次性使用):

大剪刀(两把)

刮刀(两或三把)

胰蛋白酶消化的烧瓶(每 30 g 绞碎样品一个)

带接液器的 250-μM 钢筛网

15-ml 和 50-ml 离心管

2. 分离组织样品。所有操作在层流柜中进行。

(1) 从腹整形样品分离

① 解剖样品,去除任何皮肤、筋膜、肌肉等,只保留脂肪组织。称重样品,每 10 g 分装一份。

② 在无菌盘上,用剪刀将样品剪碎。

③ 用 60 ml 注射器(不带针头)吹吸样品,反复3次或至样品充分液化。

④ 取 20 ml 组织放入装有 20 ml PBS 的 50 ml 离心管,混匀,700 r/min 离心 5 分钟吸出含血水相,重复操作,直至样品相对无血。

(2) 从吸脂样品分离

① 置真空包装样品于筛网上,用含 0.5 μg/ml 两性霉素和 200 IU/ml 庆大霉素,200 μg/ml 链霉素的 PBS 反复冲洗。冲洗过程中用刮刀在被冲洗物周围搅动,辅助冲洗。

② 取 20 ml 组织放入装有 20 ml PBS 的 50 ml 离心管,混匀,700  r/min 离心 5 分钟。吸掉含血水相。

3. PBS 溶解 BSA 至终浓度 4.0 mg/ml(PBS/BSA);过滤除菌。配制胶原酶溶液,PBS/BSA 溶解胶原酶和 DNA 酶,终浓度分别为 4.0 mg/ml 和 0.02 mg/ml,0.2 μM 滤膜过滤除菌。

10 ml 溶液大约可以处理 10 ml 脂肪样品。

4. 用无菌刮刀把步骤2中剪碎的脂肪组织刮到胰蛋白酶消化的烧瓶中,然后加入胶原酶,每毫升组织加 1 ml。

5. 37℃ 80 r/min 旋动保温 30 分钟。

6. 消化的同时,用 PBS 稀释 PBS/BSA(4.0 mg/ml BSA)至 BSA 终浓度 0.2 mg/ml。

7. 消化样品倒入 50 ml 离心管(每管约 20 ml)。

8. 吊筒式医用台式离心机室温 1500 r/min 离心 5 分钟。

9. 液态脂和水相倒入另一 50 ml 离心管。由于细胞沉淀极易被倒掉,最好使用无菌离心管。

10. 细胞重悬于 5 ml PBS(0.2 mg/ml BSA),1500 r/min 离心 5 分钟,倒掉上清。沉淀悬于 1 ml 含 5% FCS 的 PBS(PBS/FCS)中。

1. 短暂振荡,使磁珠溶液均一。

2. 用 PBS 稀释 PBS/BSA(4.0 mg/ml BSA)至 BSA 终浓度 0.2 mg/ml。

3. 取 100 μl 磁珠(1 mg)加 2 ml 含 0.2 mg/ml BSA 的 PBS(20 倍稀释磁珠混合物)。混匀,用钴-钐磁体分离样品。

4. 弃上清,沉淀悬于 100 μl PBS(含 BSA 0.2 mg/ml)。

5. 磁珠偶联抗 PECAM 抗体。

抗人 CD-31(PECAM)单克隆抗体

6. 用磁体从上清中分离磁珠,弃上清。每毫克磁珠加 3 ml PBS/BSA(0.2 mg/ml BSA),混匀,用磁珠分离。

7. 重复步骤6一次。

8. 磁珠悬于 100 μl PBS/BSA(0.2 mg/ml BSA),4℃ 可贮存数周。
1. 向“分离样品的制备”步骤10的细胞样品中加入 30 μl 偶联了抗 PECAM 抗体的磁珠。

2. 细胞和磁珠混合物冰上保温 15 分钟。

3. 磁体置于管侧 5 分钟,吸引筛选样品向磁体移动。小心吸弃上清,移开磁体。

4. 向磁珠中加 2 ml PBS/FCS,轻轻混匀,确保没有大的团块。用磁体重复筛选。

5. 重复步骤3和4三次。

6. 磁粒悬于 1 ml 接种培养基中。

7. 重悬细胞接种明胶包被的 T25 板,每 10 g 脂肪组织分离的细胞接种一块 T25 板。37℃ 振动培养。

8. 细胞长至足够密度时传代,在最初的两次传代中要应用筛选程序,确保内皮细胞纯度。

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