2005-03-25【求助】大鼠肝脏组织处理

小鼠尾静脉注射时：先用热水烫一下小鼠的尾巴，或是用乙醇先擦以下，可能情况就会好一些。

肝组织做匀浆，随后进行样品处理（沉淀、提取等）。小鼠尾静脉注射需要多加练习。具体技巧可搜索“尾静脉注射小鼠”。

谢谢两位，请问epeng，你能否说具体点如何处理呢？用甲醇沉淀肯定是不行的，因为那样太脏，更不就不能进样，很难搞干净的。我用乙酸已酯萃取的，但回收率不高，而且杂质倒不少呀，真不知怎么办才好呀？

呵呵，肝脏得药代是最不好做得，因为杂质太多，如果你要做得是亲水性成分还好一点，可以试试用极性大得溶剂萃取，要是是脂溶成分一般很难用沉淀或者萃取的方法得到，建议你用硅胶上个小柱子，采用梯度洗脱的办法除去杂质，应为我不知道你需要做药物的具体性质是怎么样的所以不好给你建议洗脱液，这个需要一点植化基础你可以去请教一下植化老师^-^

我们做组织分布时，也有这个问题，脏器太脏。我们是先匀浆，然后采用溶剂提取，我们用的是甲醇，之后低速离心，取上清液，过0.22um的滤膜，接着再高速离心，取上清液，就可以进样了。

小数的微静脉注射我们的经验是把一个研缽倒扣着老鼠,将其尾巴压在边缘上,这样尾巴就不能动了,剩下的问题就是练习的问题了,一般练个40－50只就差不多了，我现在是十发八、九中，有人常做的几乎弹无虚发，当时我们都没有用酒精擦，也没有用热水烫，没有必要。这个其实不难，小鼠经常有人剩，找来练，最多4天吧，你就是高手了。

将小鼠固定在固定器上，所谓固定器其实就是一个稍粗点的玻璃管，前端不要封死，以便通气，将小鼠放入，并将尾巴留出，末端塞上一个胶塞（胶塞边缘有一小洞，以便尾巴穿出）。尾巴上下是动脉，左右是静脉，扎的时候不宜过深，开始时可以扎进去后，往回吸一下看有血没有，以判断是否扎进去了。

试试先用水或生理盐水匀浆,再高速离心吧.之后上清夜按血浆处理方法，沉淀蛋白或萃取都可以。我做的时候就是这么做的，效果不错。

各位大师：我现在做药物动力学中的吸收试验,可是药物在krob-ringer试液里不溶,应该怎么办?加助溶剂可不可以?

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