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前段时间用了一下振动切片机，感觉要想准确的切出海马切片不太容易。然后搜索了一下，发现国外用McIlwaintissuechopper这种切片机的人也挺多的，而国内很多都是用的振动切片机。先上两张图
McIlwaintissuechopper
这种切片机的特点是从上向下竖直切下来，每切一次，下面的盘子移动一点点
振动切片机
这种切片机是水平切，将脑组织用502粘在那个小台子上切
两种切片机，我个人的理解是，上面那种可能要更好一点，对于振动切片机，组织块用502粘在小台子上，如果组织块比较大，下面一点点组织浪费也不要紧。但是如果我想切海马，先把海马剥离出来，然后再粘贴在振动切片机上，这样就没办法切了，海马体是个细长的结构，粘上去基本上就全浪费了（我看到很多国内文献都是用的振动切片机，先分离出海马体，然后再切，不知道他们是怎么解决这个问题的，在我看来，1到2周的乳大鼠，分离出的海马体是非常小的，再用胶水粘在小台子上，那都没得切了，不要告诉我说少涂掉胶水，这也解决不了根本问题）但是如果我平放在上面的组织切片机上，从上向下切，这样就没事，可以切出很多切片，完全不会浪费，但还是有个问题，上面那种切片机，虽然每切一次，下面的盘子移动一点距离，但脑组织毕竟是非常柔软的，会不会因为太柔软而不能切的均匀？放在冰水混合物中冻硬一点能不能解决这个问题？
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回复：时间：2015-11-03
我们实验室是切脑片做电生理，是这样固定脑组织的：事先做好1％的琼脂凝胶，修正适当大小的方块用502粘在切片机的载物台上，取出脑组织修整好后，放在滤纸吸一下液体，用502粘在琼脂的后面（就是退刀的方向），脑组织要紧挨着凝胶，然后立即加入冰的ACSF。
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回复：时间：2015-11-13
我用以下配方配制人工脑脊液（见附表），效果不错，能保证脑片的活性，在红外干涉相差显微镜下能观察到神经元的良好形态。基本上能保证PH值的稳定。实际上脑片培养的好坏需要注意以下几点（个人的一点体会）：ACSF的PH值，保证在7.4左右；取脑的速度，必须快，最少要在1min内完成；修整脑块的时间尽可能短；ACSF的温度（呈冰水混合状态最好）；在孵育时，脑片不能重叠，并使其两面都能接触到ACSF。人工脑脊液配制.doc(32.5k)
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回复：时间：2015-11-03
GBSS:取3蒸水1000ml，称取CaCl20.17g；KCl0.37g；KH2PO40.03g；MgCl20.1g；MgSO40.03g；NaCl7.00g；NaHCO32.27g；NaH2PO4•12H2O0.3g；D-Glucose1.0g；依次溶于1000ml蒸馏水中。0.22μm孔径的微孔滤膜过滤除菌，4℃保存。新鲜组织是不需要固定的，只要放在一个类似于塑料膜的叫Aclar膜上，它自己可粘附在上面，连膜一起切，以组织断而膜不断为宜
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