血清

我的细胞比较脆弱，无血清时不能生长。我可以尝试在有血清的条件下转染吗?

与许多其他转染试剂相反，在自d清的环境下，jetPRIME'的效率更高。因此，转染复合物可以直接加到含血清培养基的细胞中。

比值

DNA/jetPRIME@的比值是什么意思?

该比值指的是每微克DNA相对应的jetPRIME@微升数。例如，DNA/jetPRIME*比值为1:2意思是每微克DNA加2微升jetPRIME*.

抗生素

在jetPRIME"转染的过程中可以使用抗生素吗?

jetPRIME'”的转染效率不受抗生索的影响。jetPRIME@的常规批次质检都是在含血清和抗生索的培养基中进行的。

优化

如何提高转染效率?

优化的第1步是将DNA的最增加1.5倍。我们也推荐增加DNA/jetPRIME比值(每ug的DNA,2-3uljetPRIME⑧)。另-一种方法是缓慢离心培养板(5minat210g)。

细胞密度

是否可以不在意细胞密度?

细胞密度和传代次数将影响转染效率。我们推荐细胞融合度在60%至80%。对于使用jetPRIME@的转染优化条件，请参见jetPRIME@转染说明书中的Table1,根据不同培养板推学的细胞数。此外，如果细胞已经培养很长时间(超过20代)，我们建议从液氮中取的1管新细胞，重新进行培养。

细胞特异性

对于所有细胞可以使用相同的条件吗?

已优化的jetPRIME⑥操作步骤可用于多种细胞，例如A549,MCF7,U-2OS,NIH-3T3,B16-F10,Caco-2等。但是，我们也提供了针对具体缃胞的特异性操作步骤，以便获得更高的转染效率。这些具体条件可以参见PolyplusCelltransfectionDatabase。

HEK-293和HeLa细胞

HEK-293和HeLa细胞:是否可以提供使用jetPRIME@转染HEK-293和HeLa细胞的具体建议?

jetPRIME@对于DNA转染HEK-293和HeLa细胞都是非常高效的。因此，我们推荐减少DNA的量(例如6孔板，每孔1μg至0.5μg)，使用1:2的DNA和jetPRIME@的比例,

扩大

如何使用jetPRIME@扩大转染实验?

一般来说，DNA的量应该和总细胞数成比例。参考jetPRIME⑧protocol中推荐的，根据不同规格的培养皿，所需要的DNA和jetPRIME⑧的量(Table2)。

质粒共转染

当我想在一一个实验中进行多个质粒的共转染时，我该如何操作?

对于多个质粒的共转染，每孔DNA的总量不应超过说明15中标明的DNA量。每个质粒的比例根据质粒的大小、结构和期望的每个质拉的表达水平来应用。在每孔中，每个质拉至少应占总DNA量的10%。

复合物

jetPRIME@/IDNA复合物可以稳定多长时间?

复合物形成的15至30分钟内是获得最佳转染效率的时间。因此，对于需要较长孵育时间的高通量筛选实验，我们推荐使用jetPE@进行HTS，因为jetPEI@/DNA复合物可以稳定长达4小时。