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小麦花器官转化实验 - 实验方法

作者: 时间:2024-11-10 点击量:

本章介绍了一种类似于拟南芥花序浸染法的方法用于小麦花器官的转化。此方法不依赖离体胚的组织培养,而是选择在单核小孢子发育的早、中、晚期(孕穗期),将携带有花青素报告基因和NPTII选择标记基因双元载体的农杆菌菌液直接侵染剪有切口的小花。本实验来源「麦类作物转基因技术与田间鉴定实验指南」〔英〕H.D.琼斯 nbsp;P.R.休里主编。

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一、材料

1. 植物材料

Crocus 或 Chinese Spring 小麦种子由美国农业部国家种质资源信息中心提供(http: // www .   ars- grin .   gov / npgs /)。Crocus 为红色硬粒加拿大春小麦种质系 [ 7 ] ,Chinese Spring 小麦常用于遗传学研究(见注 2)。  

2. 生长设施

(1) 一个温控温室或走入式生长箱

(2) 标准化盆栽基质,如泥炭土 2 号(Fafard #2)  (Knoxville Seed and Greenhouse)

(3) 通用型奥绿肥 14-14-14  (Osmocote)  (Hummert  International)

(4) 6 in(1 in = 0.0254 m,后同)塑料盆

3. 农杆菌的培养

(1) 利用标准电激转化法获得的甘油冻存农杆菌单克隆,携带具有 pBECKSred 质粒载体的 AGL1 或 C58C1 农杆菌菌株 [ 8,9 ] (见注 3) 。

(2) 含有 50 μg/ml 壮观霉素和 50 μg/ml 利福平的 LB 培养基(Fisher Biotech) 。

(3) LB 琼脂平板 [ LB 固体培养基:12 g/L 的琼脂粉(Fisher) ,50 μg/ml 壮观霉素,50 μg/ml 利福平 ]。

(4) YEP 固体培养基:20 g/L 胰蛋白胨,10 g/L 酵母粉,50 μg/ml 壮观霉素,50 μg/ml 利福平,200 μmol/L 乙酰丁香酮(3\',5\'-二甲氧基-4\'-羟基苯乙酮)。乙酰丁香酮溶解于二甲基亚砜中(DMSO) 。

4. 渗透培养基和农杆菌的处理

(1) 1/2 MS 培养基(Fisher Biotech) [10]:pH 5.8,5% 蔗糖(m/V),0.04% Silwet L-77(V/V),0.5 mmol/L  MES(2-N-吗啉代乙磺酸),200 μmol/L 的乙酰丁香酮(见注 4) [ 11,12]。

(2) 容纳 250 ml 液体的小塑料瓶且能够承受高温高压灭菌。

(3) 小且干净的塑料包装袋和用于授粉的玻璃纸袋。

(4) 小剪刀和小镊子。

5. 筛选

(1) 解剖镜

(2) 商用漂白剂(30%);1000 ppm(1 ppm =10-6,后同)的头孢霉素(Fisher) 备用 [13 ]。

(3) 喷雾用 2% 巴龙霉素(m/F,Fisher) ,内含 0.2%(V/V)表面活性剂吐温 20 [14]。

(4) NPTII ELISA 检测(酶联免疫法)试剂盒Agdia,  Inc, Indiana) 和读数可调在 540 nm 波长的酶标仪一台。

6. Southern 杂交验证 T-DNA 的整合并检测拷贝数

见 第 13 章。

二、方法

1. 小麦的生长条件

(1) 小麦生长的环境温度(温室或气候箱内)不要超过 25℃。最理想的白天温度为 21~25℃,夜间温度为 16°C,且保持 16 h 的光照。

(2) 将含有通用型奥绿肥(Osmocote  14-14-14) 的泥炭土基质(Fafart # 2 ) 培养基装入 6 in 盆中,穴播播种小麦种子。必要时,在基质中再加入其他营养素。

(3) 虽然没有明确要求光强和光质的具体数值范围,但不能够低于 400~500 μE。

(4) 在利用农杆菌浸染小麦花器官转化前一次性浇透水,在农杆菌转化处理后 2 天内不能再次浇水。

2. 农杆菌的培养和 Vir 基因的诱导

(1) 将携带质粒的农杆菌株系(甘油冻存)接种至 5 ml 的 LB 培养基中,加入适当的抗生素,以约 160 r/min 的转速在(22±2 )℃ 条件下培养过夜。

(2) 第 2 天,取 2.5 ml 摇好的新鲜菌液接种于 250 ml YEP 培养基中(含抗生素和 200 μmol/L 的乙酰丁香酮),以 160 r/min 的转速在(22±4 )℃ 条件下培养至光密度为 1.0(OD600)。

3. 渗透培养基

在室温条件下,将含有 YEP/农杆菌的培养基以 6000 r/min 的转速离心 15 min,随后弃掉上清液。轻轻重悬农杆菌到最终浓度 1.0(OD600),处理待转化植株前,再将 Silwet-77 添加至渗透培养基中。

4. 小麦麦穗的准备与农杆菌的处理

(1) 选择孕穗期麦穗(单核小孢子发育的前期、中期和晚期)用于转化。此时的小麦麦穗依然包裹在叶鞘中,长 6~7 cm ( 图 6.1,见注 5 ) 。

(2) 打开叶鞘显露出正在发育的麦穗,其顶端和内部的花由于不育率比较高,可以去掉,也可以保留。其余的花在颖包顶端略下部剪口。

(3) 混匀农杆菌渗透培养基,然后将麦穗浸入培养基里面,浸泡 1~2 min ( 见注 6) 。

(4) 用透明的小塑料袋把浸泡后的麦穗套起来,确保塑料袋在 2 天内能够保持较高的湿度。

(5) 去掉塑料袋,让麦穗恢复正常生长。晾干农杆菌处理过的麦穗,由于植物已接近开花期,要用玻璃纸袋覆盖麦穗以防止麦株之间的交叉授粉,并让代种子自然结实(见注 7) 。



5. 筛选

在用 Southern 杂交鉴定拷贝数、逆转录聚合酶链反应(RT- PCR) 或 Northern 杂交检测目的基因的表达等费时费力的转基因检测方法之前,先用一套简便的方法进行筛选。

6. 种子的可视化检测

(1) 在体式镜下观察,以野生型为对照,筛选胚为红色的代种子(图 6.2 , 见注 8) 。

(2) 选定的转基因种子在 30% 商用漂白粉溶液中摇动并清洗 30 min,以杀死残留的农杆菌,再用灭菌水冲洗 3 次,每次摇动清洗 5 min,随后播种于基质中。

(3) 可选程序:在室温条件下,用 1000 ppm 浓度的头孢霉素处理萌发的转基因苗(步骤 1 的可选程序——第 3.6 节)2 h 以杀死残留的农杆菌 [13]。



7. 在整株水平上,利用 2% 巴龙霉素进行抗性筛选

(1) 待转基因苗和野生型植株长至 3~4 叶期时,喷洒 2%(m/V)的巴龙霉素 [ 含 0.2%(V/V)的吐温表面活性剂 ] [14]。

(2) 待植株继续生长 5~7 天后,分别对抗性和敏感株系进行统计(见注 9 ) ,选择并保留抗性株作为潜在的转基因阳性株。

8. NPTII 基因的 ELISA 筛选

(1) 参考 NPTII ELISA 酶联免疫操作手册(Agdia  Inc.) 。

(2) 非常重要的一点是,用野生型对照植物的蛋白提取液溶解试剂盒中的 NPTII 标准样品。

(3) 为了避免假阳性,尽可能选择一个以上的野生型植株作为阴性对照(见注10)。

(4) 选取转基因植株的健康组织,添加 Agdia 蛋白提取液,用微离心管提取并浓缩蛋白质样品(组织质量:缓冲液体积=1 : 5 ) 。用 1 ml 的枪头浸没植物组织,再用杵碾磨,离心 5~10 min(约 12000 r/min 的转速),取上清液保存备用。以上实验过程均在 4°C 条件下操作。

(5) 每个样品尽可能分装一式三份,取出其中一份样品用于 ELISA 检测。

(6) 检测结束后,加入 3 mol/L 的 H2SO4 以终止反应,然后在酶标仪上选择 450 nm 波长进行定量检测。ELISA 读数普遍高于野生型的单株可以初步判断为阳性转化株。

9. 利用 Southern 杂交验证 T-DNA 的整合及检测拷贝数

分别提取转基因植株、野生型对照和质粒基因组 DNA,待 DNA 酶解消化完全后,经琼脂糖凝胶电泳对酶切片段进行分离、转膜,最后用目的基因的互补探针进行杂交检测。见第 13 章。
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